導語
與小白鼠相生相殺的日子，被咬傷出血真是一件很讓人抓狂的事，不只是影響著身體健康。所謂一朝被蛇咬，十年怕井繩，心裏的恐懼還會延誤我們的課題，關乎著畢業。不懂人情世故的小編也難逃此劫，回看過去幾篇文章，其實小鼠性情溫順還挺可愛的，原來它咬傷我，在於我還不懂她……
因此，在日常實驗中，我們應該讀懂小鼠，站在小鼠的角度理解她，在不使她產生痛苦、符合生理特性、減少應激的基礎上操作，就會避免很多不必要的麻煩。下面咱們就從最基礎也最重要的小鼠抓取與固定說起，給大家介紹一下在小鼠實驗中最常接觸到的幾種實用技能（小鼠的抓取與固定；給藥方式），助你以後的實驗得心應手起來！
一、抓取與固定
很多實驗如小鼠給藥，采血等，均需要將小鼠固定住才可進行操作，因此規範準確地抓取動物是實驗的前提，既能避免動物咬人，也更便於我們實驗操作。對於一般簡單實驗，雙手就是最好的固定的工具。
1. 抓取步驟
① 右手提起小鼠尾巴，將其放在鼠籠蓋或其他粗糙表面上
② 小鼠向前掙紮爬行時，再用左手拇指和食指抓住鼠耳和頸部皮膚(如下圖)
③ 小鼠於左手心中後，用左手的無名指和小指夾其背部皮膚和尾部(如下圖)
套用： 一些簡單的操作如小鼠灌胃、皮下註射、腹腔註射、肌內註射、剪毛等
註意
①小鼠體型雖小但非常靈活，抓取時避免咬傷一定要又穩又準
② 抓尾巴時，應抓取小鼠尾巴的中部或根部，捏住尾端可能損傷小鼠
③ 由於小鼠一直在活動，一次沒抓好時要放開重新抓，不要急於下一步操作
2. 固定
進行解剖、手術、心臟采血和尾靜脈註射等操作時(必要時先行麻醉)，需做一定形式的固定。 如尾靜脈註射或采血時： 如下圖為小鼠固定器和尾靜脈註射。
第一步：開啟尾蓋，手提起小鼠尾巴，讓動物頭對準鼠筒口並使其本能的爬入固定器內；
第二步：調節小鼠固定器的長短，留出尾巴即可進行操作。
小鼠固定器
尾靜脈註射的小鼠固定
如果需要解剖或者心臟註射時：
① 麻醉小鼠
② 處於背臥式後再用大頭針（或者固定膠布）將鼠前後肢依次固定在蠟板上再進行操作。
套用： 對小鼠的解剖、手術和心臟采血等操作
二、小鼠常用給藥方法
進行藥物治療時，為了達到安全合理用藥，必須根據治療目的選擇適當的給藥途徑。接下來介紹一下常用到的小鼠給藥途徑的操作方式及各自特點。
因藥物性質和給藥目的不同，動物實驗中大概分為以下三種給藥方式：
1. 小鼠自動攝入
2. 灌胃
3. 註射給藥（皮內註射、皮下註射、肌肉註射、腹腔註射、靜脈註射、腦內註射等）
1. 小鼠自動攝入
一般是將藥物摻入飼料或者飲水中，使動物自動攝入
優點：操作簡單方便
缺點：劑量不能準確掌握，且動物個體間服藥量差異較大
2. 灌胃
藥物經口腔、食管直接送入胃中，要經過消化過程才能進入體迴圈，再到血液發揮作用。多用於急性試驗中的經口給藥法
操作方法
①抓取小鼠，頭部向上，頭向後仰使口腔和食管呈直線
②右手持註射器（一般用1ml的註射器配灌胃針頭），從一側口角進針，沿著上顎推至後頭，以針頭輕壓舌根
③灌胃針前端順利進入食管後，緩慢推進，插入針時應無阻力；
若感到阻力或動物掙紮時，應立即停止進針或將針拔出
參考給藥量：小鼠0.1ml/10g體重，最大不超過0.5ml/10g體重
優點：劑量準確，是常用，比較安全、方便經濟的給藥方法，
缺點：吸收不恒定，誤差較大。如某些藥物因本身的被物理性質而不能吸收；
有些藥物對胃粘膜有刺激作用可引起嘔吐；藥物與食物同時存在時，吸收會有影響
3. 註射給藥 （透過註射的方式，使藥物吸收）
優點：劑量準確，作用快，是動物實驗中常用的給藥方法
缺點：操作比較復雜，安全性較低、風險較大
根據註射位置分為多種註射方式。為了便於理解，首先了解一下皮膚構造，
如下圖：依次是表皮、真皮、皮下組織和肌肉層。
註射給藥中，根據實驗目的，主要分為以下幾種：
1. 皮內註射
將藥物註射於表皮與真皮之間（結合上圖），緊貼皮膚表層刺入皮內，針頭與皮膚呈10-15°角先刺入皮下，針頭向上挑起進入皮內再稍刺入，推出藥夜，見皮膚表面鼓起小皮丘，若皮丘不很快消失，證明藥液在皮內。一般選擇小鼠背部脊柱兩側皮膚進行註射
特點：適用於皮膚過敏試驗，觀察皮膚反應
參考給藥量：小鼠每次每點不超過0.05ml，兩點間隔1cm以上
2. 皮下註射
將藥物註射於皮下，提起註射部位皮膚使皮下形成空隙，將註射針沿皮膚推進5-10mm，若針頭可輕松左右擺動，表明針頭在皮下，輕輕抽吸無回流物，則可註入藥物，拔出針後應按壓針刺部位，防止藥液外漏和促進藥物吸收，一般選擇小鼠的背部
特點：皮下註射的吸收速率通常均勻而緩慢，因而作用持久；僅適用於對組織無刺激性的藥物，否則可引起劇烈疼痛和組織壞死
參考給藥量：小鼠0.1～0.3ml/10g體重
3. 肌肉註射
將針頭刺入大腿外側肌肉，註射時垂直迅速刺入肌肉，回抽針栓如無回血，將藥物註入。一般選肌肉發達，無大血管透過的部位，多選臀部
特點：藥物水溶液肌肉註射時吸收十分迅速，適用於油溶液和某些刺激性物質
參考給藥量：小鼠給藥量每次小於0.05-0.1ml
4. 腹腔註射
抓取小鼠，使其腹部朝上頭部略向下垂，抓緊背部皮膚使使腹部皮膚緊繃，於腹中線一側刺入皮下，在皮下平行腹中線推進針頭3-5mm，再以45°角向腹腔內刺入，當針尖透過腹肌後，抵抗力消失，回抽無回流物，緩慢推入藥物。
特點：是很常見的給藥方式，註射劑量大，註射後腹膜能力吸收強；尤其是在麻醉時，最常見的麻醉方法就是麻醉藥物腹腔註射
參考給藥量：每次給藥量小鼠0.2-0.8ml
5. 靜脈註射
小鼠一般采取尾靜脈註射方式，鼠尾靜脈有三根，左右兩側及背側各一根，一般選擇左右兩側尾靜脈，先距尾尖1/3處先緩註少量藥液，如無阻力，表示針頭已進入靜脈，可繼續註入。
特點：將藥物直接輸入血液，沒有消化過程，藥物直接到達迴圈系統，藥效迅速可靠。但由於高濃度的藥物迅速到達血漿和組織，增加了發生不良反應的危險性。反復註射還有賴於持續保持靜脈通暢。不適用於油溶液或不溶性物質。
參考給藥量：0.05ml - 0.1ml/10g
6. 腦內註射
一手拇指和食指抓住動物兩耳後的頭皮固定頭部，使註射針頭和額頂顱骨呈45°角，在中線外側2mm處刺入，註射速度一定要慢，避免引起顱內壓急遽升高
特點：多在微生物學動物實驗
參考給藥量：每次低於0.03ml
7. 其他註射
除了上述常見的幾種註射給藥方式外，根據你的實驗目的，還有其他註射方式，如心室註射等，這裏就不在贅述了。
小鼠的固定不僅僅是為了避免我們被咬傷，更是很多實驗操作成功的前提，所以我們一定要熟練掌握。
本文來源於公眾號「邦耀實驗室 」
